A nivel mundial, 15 millones de bebés nacen prematuros cada año. El período neonatal es un período de vida excepcionalmente vulnerable durante el cual los recién nacidos a término (RNT) pero especialmente los prematuros tienen, un mayor riesgo de mortalidad y morbilidad que puede conducir a secuelas neurocognitivas, motoras y sensoriales permanentes, constituyendo así un grave problema de salud económico y social. Una colonización microbiana adecuada durante este periodo es fundamental para la maduración apropiada del sistema inmune, el metabolismo así como el desarrollo del sistema nervioso central, favoreciendo la maduración de funciones cognitivas y sensoriales, como la visión. Las alteraciones de la microbiota pueden tener consecuencias importantes para la salud. Los RNT cuentan con un sistema de defensa antioxidante que les protegerá frente al aumento en la producción de radicales libres de oxígeno (ROS) y de nitrógeno (RNS). Sin embargo, los recién nacidos prematuros tienen un sistema de defensa antioxidante inmaduro. La leche materna (LM) ha sido reconocida como el estándar de oro para la nutrición humana. Tiene compuestos bioactivos se consideran no solo protectores sino que también estimulan el crecimiento y neurodesarrollo junto con la maduración del sistema inmune inmaduro. La leche humana donada (LHD) pasteurizada es la mejor alternativa en los prematuros menores de 32 semanas de edad gestacional, menores de 1500 gramos, cuando la leche de la propia madre (LM) no está disponible. Los beneficios demostrados de alimentar a los recién nacidos con LHD frente a las fórmulas artificiales son a corto plazo: su protección frente a la enterocolitis necrotizante la infección nosocomial y mejor tolerancia enteral. Y a largo plazo, presentan un mejor neurodesarrollo que aquellos alimentados con fórmula y un menor riesgo cardiovascular durante la adolescencia. La pasteurización causa la pérdida de algunas de las propiedades biológicas, estructurales y funcionales de la LM. OBJETIVOS: Nuestro objetivo fue determinar el impacto de la LHD sobre la microbiota intestinal, el estrés oxidativo en orina y la expresión genómica en células intestinales epiteliales exfoliadas (CIEE), en recién nacidos prematuros ingresados en una unidad de cuidados intensivos neonatales de referencia. POBLACIÓN Y MÉTODOS: Se realizó un estudio de cohortes, prospectivo, observacional y unicéntrico dónde se incluyen, durante un periodo de 12 meses, todos los recién nacidos ≤ 32 semanas de edad gestacional, ≤ 1500 gramos, ingresados en la Unidad de Neonatología del Hospital Universitario y Politécnico La Fe (Valencia, España), Se recogieron muestras fecales y de orina de 69 prematuros, cuando se consiguió la alimentación enteral completa (definida como ≥150 cc / kg / día) con LM, LHD o fórmula de prematuro (FP). La composición de la microbiota intestinal se analizó mediante secuenciación del gen de ARNr 16S. La determinación de biomarcadores de daño oxidativo al ADN y a las proteínas en muestras de orina de RNPT se realizó siguiendo un método de cromatografía líquida Ultra Performance previamente validado - espectrometría de masas en tándem (UPLC-MS / MS). El ARN total de CIEE se hibridó en el micromatriz Clariom S Human. RESULTADOS: A pesar de una mayor variabilidad, no se encontraron diferencias en la diversidad y riqueza microbiana, aunque el tipo de alimentación influyó significativamente en la composición de la microbiota intestinal en los prematuros y en los perfiles funcionales predictivos. Por otra parte, la evaluación in vivo no invasiva del estrés oxidativo no mostró diferencias estadísticamente significativas en ninguno de los 22 biomarcadores en orina, entre ambos grupos (LM vs LHD) en el momento en que se consiguió la nutrición enteral completa (150 ml / kg / día). Los genes expresados diferencialmente (DEG) derivados del análisis ANOVA (valor p <0.05) revelaron cambios estadísticamente significativos en 1629 transcripciones de CIE en neonatos alimentados con LM versus LHD. El grupo de LM sobreexpresó el gen de la lactoalbúmina alfa (LALBA), el gen de la subunidad I de la citocromo C oxidasa (COX1) y el gen kappa de las caseínas (CSN3), el gen beta (CSN2) y el gen alfa (CSN1S1) y el gen del factor citosólico de neutrófilos 1 (NCF1) infraexpresado en comparación al grupo LHD. Esto explica la falta de activación de las vías inflamatorias, la formación de citocinas no inflamatorias y el bloqueo de la generación de radicales libres de oxígeno (ROS). CONCLUSIONES: 1. La leche humana de donante favorece el desarrollo de un microbioma intestinal que se asemeja más al microbioma adquirido por los lactantes alimentados con LM propia que el microbioma de los lactantes alimentados con fórmula. 2. A pesar de estas diferencias, la leche humana de donante confiere efectos beneficiosos potenciales sobre la funcionalidad intestinal, el sistema inmunitario y las actividades metabólicas. 3. Los neonatos prematuros alimentados con leche humana de donante tienen una capacidad antioxidante similar a la de los prematuros alimentados con leche materna propia, como se refleja en el nivel de biomarcadores urinarios de daño oxidativo en proteínas, ADN o lípidos. 4. La variabilidad en términos de expresión transcriptómica en las células intestinales exfoliadas fue del 12,1% entre la LM propia y la LHD. Sin embargo, 1629 genes se expresaron de forma diferencial entre ambos grupos. 5. Los genes candidatos con diferente expresión entre los prematuros alimentados con LM propia y con LHD fueron Lactoalbúmina alfa (LALBA), Caseína kappa (CSN3), Caseína beta (CSN2), Caseína alfa-1 (CSN1S1), Citocromo C oxidasa subunidad 1 (COX1), Factor citosólico de neutrófilos 1 (NCF1). 6. El análisis biológico de estos genes indica que la LHD tiene un menor potencial antiinflamatorio que la leche materna propia. Esto es importante en cuanto a su capacidad de protección contra los patógenos y el desarrollo de la enterocolitis necrotizante. 7. A pesar de las diferencias, nuestros estudios muestran muchos datos a favor de las importantes ventajas de la LHD sobre la leche de fórmula. Sin embargo, deberían desarrollarse nuevos métodos de pasteurización más respetuosos con la integridad de la leche humana de donante.Worldwide, 15 million babies are born prematurely each year, which is to be estimated at approximately 11% of all births, with an increasing tendency in most of the countries. The neonatal period is an exceptionally vulnerable period of life during which not only full-term newborns but also, and especially premature ones have, compared to other stages of life, an increased risk of mortality and morbidity that can lead to permanent neurocognitive, motor and sensory sequelae, thus constituting a major economic and social problem. An adequate microbial colonization during this period is essential for proper maturation of the immune system, metabolism as well as the development of the central nervous system, encouraging the maturation of cognitive and sensory functions, such as vision. Microbiota alterations can have important health consequences. Full-term newborns have an antioxidant defense system that will protect them against increased production of oxygen-free radicals (ROS) and nitrogen (RNS). Nevertheless, premature newborns have an immature antioxidant defense system. Breast milk (BM) has been recognized as the gold standard for human nutrition. Those bioactive compounds are considered not only protectors but also stimulators of growth and neurodevelopment along with the maturation of the immature immune system. Pasteurized donated human milk (DHM) is the best alternative in premature children under 32 weeks of gestational age, lighter than 1.500 grams, when mother's own milk (OMM) is not available. The proven benefits of feeding newborns with DHM versus artificial formulas are for a short-term: protection against necrotizing enterocolitis, nosocomial infection and better enteral tolerance. For the long term, they have a better neurodevelopment than those fed with formula and a lower cardiovascular risk during adolescence. Pasteurization causes the loss of some of the biological, structural and functional properties. OBJECTIVES: Our objective was to determine the impact of DHM on the gut microbiota, oxidative stress in urine and genomic expression in exfoliated epithelial intestinal cells (EEIC), in premature newborns admitted to a reference neonatal intensive care unit. POPULATION AND METHODS: A cohort, prospective, observational and unicentric study was carried out where all newborns are included for a period of 12 months, ≤ 32 weeks gestational age, ≤ 1.500 grams, admitted in the Neonatology Unit of the University and Polytechnic Hospital La Fe (Valencia, Spain). Fecal and urine samples of 69 preterm were collected, when the neonates reached complete enteral feeding (defined as ≥150 cc/ kg / day). There were 3 groups: neonates fed with OMM, DHM or premature formula (FP). The composition of the gut microbiota was analyzed by sequencing the 16S RNAr gene. The determination of biomarkers of oxidative damage to DNA and proteins in urine samples of premature newborns, as well as lipid peroxidation biomarkers mediated by individual free radicals, was performed following a pre-validated Ultra Performance liquid chromatography method - tandem mass spectrometry (UPLC-MS/MS). The total RNA of CIEE was processed with the Clariom S Human micro-matrix. RESULTS: Despite greater variability, no differences in diversity and microbial wealth were found, even though the type of diet significantly influenced the composition of the gut microbiota in preterm ones and in the predictive functional profiles. Moreover, the non-invasive in vivo evaluation of oxidative stress revealed no statistically significant differences in any of the 22 biomarkers in urine, between the two groups (OMM vs. DHM) when they reached full enteral nutrition (150 ml / kg / day). The OMM group overexpressed the lactalbumin alpha gene (LALBA), the cytochrome C oxidase subunit I gene (COX1) and the casein kappa gene (CSN3), the beta gene (CSN2) and the alpha gene (CSN1S1) and the neutrophil cytosolic factor gene 1 (NCF1) was down-expressed in comparison with the DHM group. This explains the lack of activation of inflammatory pathways, the formation of non-inflammatory cytokines and the blocking of oxygen-free radical generation (ROS). CONCLUSIONS: 1. Donor human milk favors the development of a gut microbiome that resembles the microbiome acquired by infants nourished by their own mother’s milk more than microbiome in formula fed infants. Nonetheless, preterm infants nourished donor human milk, have a distinct microbial profile but shortage in the microbial diversity and richness present in the gut microbiome of infants fed with own mother’s milk. 2. Despite these differences, donor human milk confers beneficial potential effects upon intestinal functionality, immune system and metabolic activities. 3. Preterm infants nourished with donor human milk have similar antioxidant capacity as preterm fed own mother's milk as reflected in the level of urinary biomarkers of oxidative damage to proteins, DNA or lipids. 4. The variability in terms of transcriptomic expression in exfoliated intestinal cells was 12.1% between own mother´s milk and donor human milk. Nevertheless, 1629 genes were differentially expressed between both groups. 5. The candidate genes with different expression between preterm nourished with owns mother milk and donor human milk were Lactalbumin alpha (LALBA),)Casein kappa (CSN3), Casein beta (CSN2), Casein alpha-1 (CSN1S1), Cytochrome C oxidase subunit 1 (COX1), Neutrophil cytosolic factor 1 (NCF1). 6. The biological analysis of these genes indicates that donor human milk possesses a lower anti-inflammatory potential than its own mother´s milk. This is important in terms of its ability to protect against pathogens and the development of necrotizing enterocolitis. 7. Notwithstanding the differences, our studies show many data in favor of important advantages of donor human milk over formula milk. Conversely, new pasteurization methods that preserve the integrity of donor human milk should be developed.